Kultury in vitro roślin wyp. lab, kultury in vitro
[ Pobierz całość w formacie PDF ]
Kultury in vitro roślin
Wyposażenie laboratorium
Kultury in vitro
4. Trochę historii
u Totipotencja – jest to zdolność komórek zachowujących w organizmie dojrzałym charakter embrionalny do różnicowania się w różnego rodzaju komórki wyspecjalizowane w zależności od potrzeb organizmu albo też zdolność komórek dojrzałego organizmu do odróżnicowania się.
Trochę historii
u 1839 rok – Schwan i Schleiden sformułowali teorię totipotencji komórek roślinnych, czyli zdolności odtwarzania całej rośliny z pojedynczej komórki.
Trochę historii
u Myśl tę podjął Gottlieb Haberlandt, austriacki botanik, którego zwykle uważa się za właściwego "ojca" roślinnych hodowli tkankowych.
u W 1898 r założył hodowle komórek izolowanych z miękiszu palisadowego, skórki i włosków epidermalnych kilku roślin (jasnoty purpurowej - Lamium purpureum i hiacynta wodnego - Eichornia crassipes, śniedka - Ornithogalum, miodunki - Pullmonaria mollissima).
Trochę historii
u Inkubował je na pożywce Knopa wzbogaconej sacharozą, asparaginą i peptonem.
u Obserwował wydłużanie się komórek palisadowych, zmiany ich kształtu, grubienie ścian komórkowych, pojawianie się skrobi w chloroplastach.
u Komórki pozostawały żywe przez kilka miesięcy, nie udało się jednak Haberlandtowi zmusić ich do podziałów.
u Wyniki tych pionierskich doświadczeń były więc niezbyt zachęcające, mimo to niezrażony badacz sformułował kilka hipotez - niezwykle śmiałych, inspirujących, a z dzisiejszej perspektywy wręcz proroczych.
Trochę historii
u Gottlieb Haberlandt zakładał że:
u izolowane komórki roślinne można będzie kiedyś utrzymywać w czystych hodowlach przez dowolnie długi czas;
u nawet komórki somatyczne (niegeneratywne) można będzie pobudzić do tworzenia zarodków i odtwarzania całych roślin;
u substancje pobudzające podziały zostaną otrzymane z tkanek merystematycznych i rozrodczych;
u hodowle komórkowe staną się ważnym narzędziem w badaniach rozwoju roślin.
Trochę historii
u Minęło sporo lat zanim zdołano doświadczalnie wykazać słuszność wszystkich tych założeń Gottlieba Haberlandta.
u Do 1939 r otrzymano stale rosnące, wieloletnie hodowle roślinnych komórek i korzeni.
u Prowadzono też hodowle in vitro niedojrzałych zarodków.
u Ogromny postęp w roślinnych kulturach in vitro nastąpił po drugiej wojnie światowej, w dużej mierze dzięki wyizolowaniu i scharakteryzowaniu fitohormonów.
Trochę historii
u Wtedy też stało się możliwe doświadczalne zademonstrowanie totipotencji pojedynczych komórek somatycznych, tj. ich zdolności do odtworzenia całego organizmu.
u Ta nadzwyczajna właściwość komórek, świadczy o tym, że każda (w zasadzie) komórka zawiera pełną informację genetyczną niezbędną do działania całego wielokomórkowego organizmu. Wykorzystuje się to praktycznie w metodach masowego rozmnażania roślin.
Trochę historii
u 1902 rok – doświadczenia Haberlandta na izolowanych fragmentach roślin (włoski) i ich próba utrzymania przy życiu bez pozytywnych rezultatów.
u 1922 rok – badania Knudsona nad asymbiotycznym kiełkowaniem nasion storczyków w kulturach in vitro.
Trochę historii
u 1929 rok - hodowla zarodków lnu jako metoda ominięcia problemów wynikających z międzygatunkowego krzyżowania (Laibach)
u 1934 rok – badania Whitea nad wzrostem korzeni pomidora w kulturach in vitro (pożywka zawierała glukozę i wyciąg z drożdży, eksplantaty przeszczepiano co pewien okres czasu utrzymując je w hodowli).
u 1939 rok – badania Whitea, Gauthereta i Nobecourta na kulturach kalusa. Udało się utrzymać przy życiu ciągle rosnącą, niezorganizowaną masę komórek. Zastosowano auksynę w pożywce.
Trochę historii
u 1941 rok – zastosowanie przez van Overbecka mleka kokosowego w pożywkach do hodowli Datura
u 1946 rok – eksperymenty Balla na łubinie i nasturcji, w których po raz pierwszy udało się przeprowadzić regenerację całych roślin z wierzchołków pędów w kulturach in vitro.
u 1948 rok – badania Skooga i Tsui nad ustaleniem odpowiedniego stosunku auksyn do adeniny co pozwoliło na ukształtowanie pędu i korzenia z kalusa tytoniu.
u 1950 rok – otrzymanie przez Balla organów w kulturach kalusa Sequoia sempervirens.
u 1952 rok – otrzymanie przez Morela i Martina bezwirusowych dalii z kultur merystemów wierzchołkowych
Trochę historii
u 1954 rok – eksperymenty Muira i współpracowników, w których udało się zregenerować roślinę z pojedynczej komórki.
u 1957 rok – badania Skooga i Millera nad kinetyną i jej rolą w procesach formowania pędu i korzenia w zależności od jej stosunku do auksyn.
u 1958 rok – uzyskanie przez Stewarda prazarodków w kulturach zawiesinowych kalusa
u 1959 roku – pierwszy podręcznik o kulturach in vitro tkanek roślinnych Gauthereta.
Trochę historii
u 1960 rok - opracowanie prze Morela metody otrzymywania storczyków z kultur merystemów
u 1965 rok – indukowanie kwitnienia w kulturach in vitro tytoniu pochodzącego z wycinków kwiatów (Aghion- Pratt).
u 1966 rok – pierwsza roślina haploidalna otrzymana z ziaren pyłku (Guka i Mekeswari).
u 1967 rok – Pierik indukuje zawiązywanie kwiatów w kalusie Lunaria annua (miesiącznica roczna) po przetrzymywaniu roślin macierzystych w niskiej temperaturze a Bourgin i Nitsch otrzymują haploidalne rośliny z ziarn pyłku.
u 1969 rok – pierwsza izolacja protoplastów z kultur zawiesinowych (Erikson i Jonassek).
u 1970 rok – pierwsza fuzja dwóch protoplastów przeprowadzona przez Powera i innych.
u 1972 rok – krzyżowanie międzygatunkowe w wyniku fuzji protoplastów przeprowadzone przez Carlsona.
Wyposażenie laboratorium kultur tkankowych.
u Powinno ono się składać z następujących części:
u A) Pożywkarnia
u B) Pokój wagowy
u C) Myjnia
u D) Komora do szczepień
u E) Pokój lub komora hodowlana.
Schemat rozmieszczenia pomieszczeń
Wyposażenie laboratorium kultur in vitro
u 1. Pożywkarnia
u 2. Pokój zaplecza technicznego i wagowy
u 3. Myjnia
u 4. Pokój szczepień
u 5. Pokój hodowlany
u 6. Pokój hodowlany
u 7. Szklarnia
u 8. Tunel foliowy lub szklarnia
Wyposażenie pracowni kultur tkankowych
u Pożywkarnia
u miejsce gdzie przygotowuje się pożywki i naczynia.
Pożywkarnia
u Pożywkarnia – jest to miejsce, gdzie przygotowuje się pożywki i naczynia.
u Potrzebne są więc tutaj duże stoły , szafki z półkami na szkło laboratoryjne, szufladami na korki, kapsle, watę, narzędzia , recepturki, i inne drobne przedmioty.
u Na stole powinien być ustawiony pHmetr , mieszadło magnetyczne, łaźnia wodna i maszynka elektryczna.
u W tym pomieszczeniu powinna być także ustawiona lodówka w której przechowuje się odczynniki chemiczne, wymagające obniżonej temperatury oraz roztwory macierzyste do pożywek.
Wyposażenie laboratorium kultur tkankowych
u Pokój wagowy – miejsce gdzie powinna się znajdować dokładna waga laboratoryjna na stabilnym stole.
Pokój wagowy.
u Pokój wagowy - obok pożywkarni powinien się znajdować pokój wagowy.
u Ważenie poszczególnych substancji wymaga dużej dokładności i powinno odbywać się w cichym , nie narażonym na wstrząsy pomieszczeniu.
u Jeżeli brak jest odrębnego pokoju wagi można ustawić w pożywkarni w najbardziej stabilnym miejscu, gdzie nie ma wahań temperatury i przeciągów.
Pokój wagowy.
u Waga laboratoryjna i waga techniczna powinny być ustawione na stole wagowym lub na innym stabilnym wypoziomowanym blacie.
u Obok powinno być miejsce na odstawianie odczynników i naczyń, które po skończonym ważeniu chowa się do podręcznej szafki, lodówki lub eksykatora zgodnie z instrukcją na opakowaniu.
u W pomieszczeniu tym można także ustawić pHmetr.
Pokój wagowy
Wagi
Wyposażenie laboratorium kultur tkankowych
u Myjnia – miejsce gdzie odbywa się składowanie i mycie wykorzystanego szkła laboratoryjnego.
Myjnia
u Myjnia – powinno się tu odbywać mycie szkła laboratoryjnego i likwidacja niepotrzebnych kultur.
u Tu może być także zlokalizowany autoklaw – urządzenie służące do sterylizacji pożywek pod ciśnieniem w parze o odpowiedniej temperaturze.
u Obok zlewu z jednej strony powinno być miejsce na brudne naczynia i szkło a drugiej strony powinna być umocowana tablica z kołkami do ociekania lub stół ociekowy.
u Jeżeli pomieszczenie to jest dostatecznie duże powinna być tutaj także suszarka z wyłącznikiem czasowym co usprawnia pracę ponieważ można ją wykorzystywać wtedy po godzinach pracy.
Myjnia
u Można wyposażyć myjnie w maszynę do zmywania naczyń lub myjnię laboratoryjną.
u Można wtedy zaprogramować mycie w zależności od stopnia zabrudzenia i uzyskiwać pożądany stopień ich czystości po umyciu.
u Dobrze jest jednak najpierw ręcznie umyć szkło w zlewach lub miednicach a dopiero potem włożyć do maszyny do zmywania.
Myjnia
u Zakażone kultury najlepiej wysterylizować przed otwarciem naczyń aby nie rozsiewać mikroorganizmów w laboratorium a więc po raz kolejny niezbędny jest autoklaw.
u Przestrzeganie czystości jest niezbędnym warunkiem przy pracy z kulturami in vitro.
u Tu może być także zlokalizowana destylarka.
u Woda destylowana jest niezbędna do przygotowania pożywek i innych roztworów a także do płukania szkła laboratoryjnego.
u Niektórzy zalecają także użycie dejonizatora wody.
u Do przechowywania wody destylowanej powinny służyć specjalne , czyste, zamykane pojemniki.
Zmywarki
Sterylizacja
u Sterylizacja to proces technologiczny polegający na zniszczeniu wszystkich, zarówno wegetatywnych, jak i przetrwalnikowych form mikroorganizmów.
u Prawidłowo wysterylizowany materiał jest jałowy - nie zawiera żadnych żywych drobnoustrojów oraz ich form przetrwalnikowych czy toksyn.
u Jedynie kontrolowany i powtarzalny proces sterylizacji jest procesem bezpiecznym.
Sterylizacja
u Sterylizacja w autoklawach jest zalecana przez wszystkie organy służby zdrowia, w tym przez Światową Organizację Zdrowia (WHO) oraz Centrum Kontroli Chorób (CDS-USA).
u Polega ona na poddaniu materiałów wysokiej temperaturze pary wodnej o wysokim ciśnieniu w określonym czasie.
u Istnieją ustalone wartości tych parametrów, odpowiednie dla danego rodzaju narzędzi / materiałów.
u Zwykle stosuje się cykle o następujących minimalnych wartościach: 134oC przy ciśnieniu 2 bar w czasie 4 min. oraz 121oC przy 1,2 bar w czasie 15 minut.
Sterylizacja
u Norma Europejska EN 13060 dzieli autoklawy na trzy klasy sterylizacyjne:
u "B" - z frakcyjną próżnią wstępną , czyli kilkukrotnym odpompowaniem powietrza z komory autoklawu do wartości ciśnienia ok. -0,85 bar (względem atmosferycznego) i wtłoczeniem pary wodnej oraz z próżnią końcową zalecane przy sterylizacji materiałów porowatych, z zagłębieniami i pakietowanych.
u "S" - z jednorazową próżnią wstępną polegającą na wytworzeniu na chwilę przed cyklem podciśnienia o wartości -0,7 bar;
u "N" - autoklawy bez próżni lub bez suszenia.
Autoklaw
Wyposażenie laboratorium kultur tkankowych
u Komora do szczepień – jest to komora w której powietrze przepływa przez filtr, oczyszcza się z drobnoustrojów i jest kierowane w stronę osoby pracującej.
u Może to być miejsce wyjałowione lampami bakteriobójczymi.
Komora do szczepień
u Komora do szczepień. – komora do szczepień z laminarnym przepływem sterylnego powietrza jest urządzeniem dość drogim ale niezbędnym przy tego typu pracach.
u Powietrze oczyszcza się z zarodników, bakterii i pyłów przepływając przez system filtrów po czym jest kierowane w stronę osoby pracującej w komorze.
u W takiej komorze łatwiej jest zachować warunki aseptyczne.
u Przed przystąpieniem do pracy należy dokładnie spryskać komorę, jej blat i narzędzia 70% etanolem.
Komora do szczepień
u Następnie narzędzia płucze się w wodzie destylowanej i osusza między złożonymi arkuszami bibuły.
...
[ Pobierz całość w formacie PDF ]